Biokontrollmittel der Wurzel - Hainan Propane Group Co., Ltd

Wissenschaftliche Berichte Band 13, Artikelnummer: 11103 (2023) Diesen Artikel zitieren

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Details zu den Metriken

Diese Studie wurde durchgeführt, um die Fähigkeit einiger Pilzkulturfiltrate als Biokontrollmittel gegen die durch Fusarium solani verursachte Okra-Welke zu bewerten. und Meloidogyne javanica. In der vorliegenden Studie wurden Pilzkulturfiltrate (FCFs) von Aspergillus terreus (1), Aspergillus terreus (2), Penicillium chrysogenum und Trichoderma spp. wurden in vitro gegen M. javanica getestet. Die Wirkungen von P. chrysogenum und Trichoderma spp. (FCFs) zur Bekämpfung von Wurzelfäulepilzen und Wurzelknotennematoden-Krankheitskomplexen an Okra-Pflanzen wurden unter Gewächshausbedingungen (In vivo) untersucht. In-vitro-Experimente ergaben, dass die kumulative Rate der J2s-Mortalität von M. javanica nach 72 Stunden bei P. chrysogenum und Trichoderma spp. 97,67 bzw. 95 % erreichte. Inkubation. Darüber hinaus zeigte Trichoderma spp. mit einem Prozentsatz von 68 % die wirksamste Hemmwirkung gegen das radiale Wachstum des Erregers. P. chrysogenum belegte mit 53,88 % den zweiten Platz, während A. terreus (2) mit 24,11 % die schwächste Hemmwirkung zeigte. T6 [Nematodeninfektion (M. javanica) + Pilzinfektion (F. solani) + Überlauf mit Pilzkulturfiltrat (P. chrysogenum)] und T8 [Nematodeninfektion (M. javanica) + Pilzinfektion (F. solani) + Besprühen mit Pilzkulturfiltrat (P. chrysogenum)] hatte die größten Auswirkungen auf die Fressindizes von Nematoden an Okra-Wurzeln und reduzierte die Reproduktionsfaktoren im Gewächshaus erheblich (In-vivo-Experiment). T6 war die beste Behandlung, um die Schwere der Erkrankung zu verringern (28 % relativ). Andererseits verzeichnete T12 [(Pilzinfektion (F. solani) + (Dovex 50 % Fungizid mit Bewässerungswasser)] den relativ niedrigsten Krankheitsschweregrad (8 %). Die Ergebnisse zeigten, dass die Nematodeninfektion oder die Pilzinfektion oder beides abnahmen Alle untersuchten anatomische Eigenschaften von Okra-Wurzel, -Stamm und -Blättern. Wir kamen aus dieser Studie zu dem Schluss, dass Wurzelknotennematoden und Wurzelfäulepilze durch die Verwendung von Pilzkulturfiltraten reduziert wurden und das Pflanzenwachstum verbessern könnten.

Okra (Abelmoschus esculentus L.) Moench ist eine äußerst nährstoffreiche Kulturpflanze, die in Regionen mit mediterranem, tropischem und subtropischem Klima angebaut wird1. Allerdings wird die Okra-Produktion oft durch eine Reihe von Insekten- und Krankheitsproblemen behindert, darunter Wurzelknotennematoden (Meloidogyne spp.) und Pilzpathogene2. Diese Schädlinge können die Ernteerträge erheblich verringern, was zu wirtschaftlichen Verlusten für Landwirte und Nahrungsmittelknappheit für Gemeinden führt.

Pflanzenparasitäre Nematoden gehören zu den schädlichsten Schädlingen von Gemüsepflanzen und verursachen jedes Jahr erhebliche weltweite landwirtschaftliche Produktionsverluste3. Wurzelknotennematoden sind mit einem Lebenszyklus von 25 Tagen bei 27 °C4 die häufigsten und kommerziell bedeutendsten Nematodenschädlinge. Nematoden- und Pilzbefall gelten als die wichtigsten biotischen Faktoren, die die Pflanzenproduktion verringern, und Nematoden können Pflanzen auch für eine sekundäre Invasion durch Pilzkrankheiten prädisponieren und die Krankheitsschwere durch Veränderung der Pflanzenwurzeln verschlimmern5.

Die chemische Bekämpfung von Nematoden und Pilzen ist kostspielig und birgt potenzielle Risiken für die Umwelt und die öffentliche Gesundheit6,7. Daher ist die Entwicklung sicherer und wirksamer Techniken zur Behandlung dieser schädlichen Infektionen von entscheidender Bedeutung. Die biologische Bekämpfung ist eine sicherere Alternative zu chemischen Nematiziden, und Penicillium- und Trichoderma-Pilze stehen im Ruf, feindselig gegenüber pflanzenparasitären Nematoden zu sein8,9. Über die Wirkungsweise von Pilzkulturfiltraten (FCF) und ihre Wirksamkeit bei der Bekämpfung komplexer Krankheiten, die durch Wurzelknotennematoden und Fäulewurzelpilze in Okra-Pflanzen verursacht werden, ist jedoch wenig bekannt.

In dieser Studie untersuchen wir den Einfluss der Strategie biologischer Bekämpfungsmittel (Pilzkulturfiltrate) auf die Bekämpfung der komplexen Krankheit, die durch Wurzelknotennematoden und Wurzelfäulepilze verursacht wird. Wir untersuchen auch die Wirkungsweise von FCF auf die morphologischen Merkmale, die anatomische Analyse und die Produktivität von Okra-Pflanzen. Ziel unserer Studie ist es, zur Entwicklung sicherer und wirksamer Techniken zur Prävention und Kontrolle von Krankheitserregern in der Okra-Produktion beizutragen.

Auf Kartoffel-Dextrose-Agar (PDA)-Medium wurden die verursachenden pathogenen Pilze mithilfe der Agarplattentechnik10 isoliert. Unter Verwendung des herkömmlichen Ansatzes mit Hyphenspitze konnten Fusarium spp. wurde aus den erkrankten Okra-Pflanzen isoliert und in Reinkultur eingeführt11. Um das Bakterienwachstum im Medium vor der Sterilisation zu stoppen, wurden 250 mg L−1 Chloramphenicol (l-Chloramphenicol) hinzugefügt12. Mithilfe der Einzelsporen- oder Hyphenspitzenverfahren wurde der produzierte Pilz gereinigt13. Für nachfolgende Studien wurden Stammkulturen auf PDA-Schrägen in einem Kühlschrank bei 5 °C aufbewahrt. Die physikalischen Eigenschaften von Myzelien und Sporen, wie von Leslie und Summerell14 und Ismail et al.15 beschrieben, wurden zur Identifizierung von Pilzisolaten verwendet.

Der von Hallmann et al.16 entwickelte modifizierte Ansatz wurde zur Isolierung endophytischer Pilze verwendet. Die erhaltenen Wurzel- und Zweigproben wurden sorgfältig mit sterilem destilliertem Wasser gereinigt und anschließend mit einem milden Reinigungsmittel und fließendem Leitungswasser gewaschen, um Schmutzpartikel und anhaftende Ablagerungen zu entfernen. Eine Minute lang wurde 70 %iges Ethanol zur Oberflächensterilisierung der Proben verwendet. Die Proben wurden 3 Minuten lang in 4 %iges Natriumhypochlorit getaucht, um die Oberflächen gründlich zu sterilisieren und alle anhaftenden Keime zu entfernen. Anschließend wurden die Proben auf sterilem Filterpapier getrocknet und mit sterilem destilliertem Wasser gewaschen. Mit einem sterilen Skalpell wurden die Proben in 5–10 mm große Stücke geteilt und in Petrischalen mit PDA-Medium, dem Chloramphenicol (250 mg L–1) zugesetzt war, um das Bakterienwachstum zu hemmen, gezüchtet. Petrischalen wurden mit Parafilm bedeckt, 15 Tage lang bei 27 ± 2 °C im Dunkeln inkubiert und täglich überprüft. Es wurden getrennte Übertragungen der gereinigten endophytischen Pilzisolate auf PDA-Schrägkulturen durchgeführt. Abschließend wurden alle gereinigten endophytischen Pilze bis zur weiteren Verwendung bei 4 °C gelagert. Laut Domsch et al.17, Domsch et al.18 wurden endophytische Pilzisolate am Moubasher Mycological Center (AUMMC) der Assiut University in Assiut, Ägypten, anhand ihrer makro- und mikroskopischen Merkmale erkannt. Endophytische Pilze P. chrysogenum und Trichoderma spp. wurden auf Kartoffel-Dextrose-Brühe (PDB) gezüchtet und 21 Tage lang bei 25 °C inkubiert, dann durch sterilisiertes Käsetuch filtriert, um Myzelmatten zu entfernen, und dann durch Membrane Solutions MS CA-Spritzenfilter (0,45 μm) filtriert, um dann zellfreie Kulturfiltrate zu erhalten Bis zur Verwendung als Standlösungen im Gefrierschrank (bei 5 °C) aufbewahren.

Eine Reinkultur von M. javanica wurde aus einer einzigen Eimasse gezüchtet, die aus infizierten Okra-Wurzeln entnommen und auf Tomatenkulturen am Leben gehalten wurde. Strian-B im Gewächshaus. Das gesamte Wurzelsystem der infizierten Pflanzen wurde in Wasser getaucht und sorgfältig gereinigt, um anhaftenden Schmutz zu entfernen, bevor sie aus dem Boden entwurzelt wurden. Mit einer Pinzette wurden die Eimassen entnommen, anschließend mit sterilem Wasser gereinigt, in eine 0,5 %ige Natriumhypochloritlösung (NaOCl) gegeben, vier Minuten lang gerührt und dann auf einem 26-µm-Sieb getrocknet19. Eine modifizierte Version der Baermann-Trichtertechnik wurde verwendet, um die Eier drei bis fünf Tage lang zu inkubieren, um Jungtiere im zweiten Stadium (J2) für In-vitro- und Topfstudien zu erzeugen20.

Die Beurteilung erfolgte in 5 cm großen, sauberen Petrischalen. Als Kontrolle wurden mit destilliertem Wasser gefüllte Petrischalen verwendet. A. terreus (1), A. terreus (2), P. chrysogenum und Trichoderma spp. Pilzkulturfiltrate der Konzentration S/5 wurden durch Zugabe von 5 ml destilliertem Wasser zu 1 ml der Standardkonzentration „S“ hergestellt, um die Mortalität des Jungtiers zu untersuchen. In der Studie wurden einhundert Exemplare aus dem zweiten Stadium (J2) von M. javanica verwendet. Von jeder Behandlung wurden drei Wiederholungen durchgeführt. Alle Toten und Lebenden (J2) wurden nach 72-stündiger Inkubation gezählt, um den Anteil der J2-Mortalität zu bestimmen.

Ziel der Studie war es, die Wirksamkeit von Kulturfiltraten aus endophytischen Pilzen bei der Bekämpfung von F. solani zu bewerten. Um dies zu erreichen, wurden sterilisierte Petrischalen mit Kulturfiltraten von A. terreus (1), A. terreus (2), P. chrysogenum und Trichoderma spp. gefüllt, alle in einer Konzentration von 10 % (v/v). Man ließ das PDA-Medium erstarren, bevor man Myzelscheiben von F. solani mit 6 mm Durchmesser, die aus aktiv wachsenden Kolonien stammten, in die Mitte der verfestigten Agarplatten platzierte. Die Kontrollgruppe wurde mit sterilisiertem destilliertem Wasser anstelle von Kulturfiltrat behandelt. Anschließend wurden die Petrischalen vier Tage lang bei 25 ± 2 °C inkubiert. Anschließend wurde der Prozentsatz der Hemmung des radialen Koloniewachstums durch Vergleich der Ergebnisse mit der Kontrollgruppe berechnet. Die prozentuale Hemmung des Myzelwachstums der Krankheitserreger wurde anhand der folgenden Formel21 berechnet.

wobei D1 = Koloniedurchmesser in der Kontrollplatte und D2 = Koloniedurchmesser in der behandelten Platte.

Die Pflanzenexperimente entsprachen den örtlichen und nationalen Vorschriften und folgten den Regeln der Zweigstelle der Al-Azhar-Universität Assiut (Assiut, Ägypten). Wir haben die Erlaubnis, dass unsere Studien den relevanten institutionellen, nationalen und internationalen Richtlinien und Gesetzen entsprochen haben. Die Studien wurden im experimentellen Gewächshaus der Abteilung für Pflanzenpathologie der Landwirtschaftsfakultät der Zweigstelle der Al-Azhar-Universität Assiut (27°12′16,67′′ N; 31°09′36,86′′ E) durchgeführt. Okrasamen der Sorte OH-102 wurden 3 Minuten lang mit 1 % Natriumhypochlorit sterilisiert, dann vorsichtig mit sterilisiertem destilliertem Wasser gespült und anschließend gründlich getrocknet. Mit Formalin desinfizierter Schluff- und Tonboden wurde im Verhältnis eins zu eins in Plastiktöpfen mit 25 cm Durchmesser gemischt. Auf autoklaviertem Sandgerstenmedium wurden Inokula von F. solani hergestellt, indem der erforderliche verursachende pathogene Pilz zwei Wochen lang bei 25 °C kultiviert wurde. Das vorbereitete Inokulum wurde vor dem Pflanzen in einer Menge von 3 Gewichtsprozent gründlich mit der Topferde vermischt und eine Woche lang stehen gelassen. Als Kontrolle wurde Topferde im gleichen Verhältnis mit pathogenfreier, sterilisierter Sandgerste kombiniert. Okra-Samen, die oberflächensterilisiert worden waren und in gutem Zustand zu sein schienen, wurden in Töpfen mit einer Menge von vier Samen pro Topf ausgesät. Bei jeder Behandlung wurden fünf replizierte Töpfe verwendet. Den Okra-Pflanzen wurden zwei Wochen nach dem Pflanzen 3000 frisch geschlüpfte Jungtiere aus der Reinkultur von M. javanica injiziert. Zur Durchführung der Inokulation wurde die erforderliche Menge Nematodensuspension in drei um die Pflanzen herum gebohrte Löcher injiziert. Um ein Austrocknen der Löcher zu verhindern, wurde die Erde darüber gelegt.

Das Experiment wurde in einem randomisierten Komplettblockdesign durchgeführt. Die Behandlungen für das Experiment waren:

T1 [Nematodeninfektion (M. javanica)].

T2 [Nematodeninfektion (M. javanica) + Überlauf mit Pilzkulturfiltrat (P. chrysogenum)].

T3 [Nematodeninfektion (M. javanica) + Überlauf mit Pilzkulturfiltrat (Trichoderma spp.)].

T4 [Nematodeninfektion (M. javanica) + (Oxamyl 24 % Pestizid mit Bewässerungswasser)].

T5 [Nematodeninfektion (M. javanica) + Pilzinfektion (F. solani)].

T6 [Nematodeninfektion (M. javanica) + Pilzinfektion (F. solani) + Überlauf mit Pilzkulturfiltrat (P. chrysogenum)].

T7 [Nematodeninfektion (M. javanica) + Pilzinfektion (F. solani) + Überlauf mit Pilzkulturfiltrat (Trichoderma spp.)].

T8 [Nematodeninfektion (M. javanica) + Pilzinfektion (F. solani) + Besprühen mit Pilzkulturfiltrat (P. chrysogenum)].

T9 [Nematodeninfektion (M. javanica) + Pilzinfektion (F. solani) + Besprühen mit Pilzkulturfiltrat (Trichoderma spp.)].

T10 [Pilzinfektion (F. solani) + Überlauf mit Pilzkulturfiltrat (Trichoderma spp.)].

T11 [Pilzinfektion (F. solani) + Überlauf mit Pilzkulturfiltrat (P. chrysogenum)].

T12 [(Pilzinfektion (F. solani) + (Dovex 50 % Fungizid mit Bewässerungswasser)].

T13 Pilzinfektion (F. solani).

T14 [Kontrolle (unbehandelt)].

Pilzkulturfiltrate (FCFs) wurden vier Tage nach der Inokulation mit Nematoden (zwei Wochen nach dem Pflanzen) übergelaufen oder auf die Blattoberfläche gesprüht auf die Pflanzen aufgetragen. Oxamyl 24 % und Dovex 50 % wurden in der vom Hersteller empfohlenen Dosis für die Resistenz gegen Nematoden bzw. Pilze angewendet.

Während des Experiments wurden alle drei Tage Erntemessungen (Anzahl der Früchte, Fruchtlänge und Fruchtgewicht) geschätzt. Acht Wochen nach der Inokulation wurden die Pflanzen vorsichtig aus dem Boden entwurzelt und auf Sprosslänge, Wurzellänge, Pflanzengewicht, Stammdurchmesser, Anzahl der Zweige, Blattfläche und Blattzahl gemessen. Zusätzlich wurden die Anzahl der Gallen, die Eimasse/Wurzel und die Eier/Eimasse gezählt. Die endgültige Nematodenpopulation und die Nematodenreproduktionsrate wurden geschätzt.

Nach Angaben von Abdel-Razik et al.22 wurde der Schweregrad der Fusarium-Welkekrankheit (%) nach Ablauf von 60 Tagen seit der Pflanzung mithilfe der Krankheitsschweregradskala (DS) (0:5) bestimmt, die [0 = keine sichtbaren Symptome] anzeigte ; 1 = leichte Blattadern und Chlorose der Blätter; 2 = Gelbfärbung und Welken der unteren Blätter, die sich auf die oberen Blätter ausbreiten; 3 = Braun (Verfärbung) der Gefäßsysteme von Pfahlfäule und Stängel; 4 = weist auf nekrotische Streifen an der Stängelbasis hin, die sich zur Spitze hin erstrecken, während 5 = auf ein frühes Absterben der Pflanze hinweist. Die folgende Gleichung wurde verwendet, um den Prozentsatz des Krankheitsschwereindex (DSI) für jedes getestete Isolat zu berechnen:

Dabei ist (d) die Gesamtkrankheitsbewertung für jede Pflanze, (d max) die maximale Krankheitsbewertung und (n) die Gesamtzahl der in jedem Duplikat getesteten Pflanzen.

60 Tage nach dem Pflanzen wurde eine vergleichende anatomische Untersuchung der Wurzel, des Stängels und des Blattes von behandelten und Kontroll-Okra-Pflanzen durchgeführt. Es wurden Proben von Okra-Wurzeln, -Stängeln und -Endblättern gesammelt. Die Stamm- und Blattproben wurden aus dem 5. apikalen Internodium des Hauptstamms und dem entsprechenden Blatt mit den erfolgreichsten Behandlungen, d. h. T1, T5, T6, T7 und T13, zusätzlich zu denen der Kontrolle (T14) entnommen. nach 60 Tagen. Die Wurzelspitzen wurden im Abstand von 0,5 cm beprobt. Die Proben wurden gesammelt, abgetötet und in einer Lösung konserviert, die (5 ml Formalin, 10 ml Eisessig und 85 ml 70 %iges Ethanol) enthielt. Anschließend wurde es in 50 %igem Ethylalkohol gewaschen, in einer Reihe von Ethylalkoholen (50, 70, 80, 90, 95 und 100 %) dehydriert, in Xylol infiltriert und in Paraffinwachs mit einer Schmelztemperatur von 40–45 °C eingebettet C, auf einem Rotationsmikrotom in einer Dicke von 5–7 m geschnitten, mit dem Doppelfärbeverfahren (hellgrün und Safranin) gefärbt, in Xylol geklärt und in Kanadabalsam montiert23. Die Schnitte wurden untersucht, um histologische Hinweise auf behandlungsbedingte spürbare Reaktionen zu finden. Die vorbereiteten Schnitte wurden unter einem Mikroskop untersucht und mittels computergestützter morphometrischer Analyse wurden Zählungen und Messungen (µ) durchgeführt. Diese Analyse wurde mit einem Forschungsmikroskop vom Typ Axiostar plus der Firma Zeiss durchgeführt, das für den Einsatz eines professionellen digitalen Bildanalysesystems (Carl Zeiss Axiovision Product Suite DVD 30) aufgerüstet wurde.

Die folgenden Messungen wurden aufgezeichnet: 1 – Anatomische Merkmale der Okra-Wurzel: Wurzeldurchmesser (Ø der Wurzel); Kortexdicke; Durchmesser des Gefäßzylinders (Ø von VC); Länge des Xylembogens. 2 – Anatomische Merkmale des Okra-Stiels: Stieldurchmesser (Ø des Stiels); Kortexdicke; Durchmesser des Gefäßzylinders (Ø von VC); Gefäßbündeldicke (VB-Dicke); Markdicke. 3 – Anatomische Merkmale des Okra-Blattes: Dicke der Blattmittelrippe; schwammige Gewebedicke; Dicke des Palisadengewebes; Leitbündeldicke (VB-Dicke).

Für jede Behandlung wurden drei bis vier Doppelexperimente durchgeführt, um dem Zufallsprinzip gerecht zu werden. Zur Analyse der Wachstumsparameter und des Ertrags sowie zur Beurteilung der Signifikanz wurde eine Einweg-Varianzanalyse (ANOVA) verwendet, die mit der Software (Statistix 8.1) zur statistischen Analyse der Versuchsergebnisse durchgeführt wurde. Um die Variationen zwischen den Mittelwerten zu untersuchen, die statistisch signifikant waren, wurden Duncans Mehrfachbereichstests mit einer Konfidenz von 95 % durchgeführt24.

Die Autoren erklären, dass sie über die entsprechende Erlaubnis verfügen.

Die Pilzkulturfiltrate (FCFs) von A. terreus (1), A. terreus (2), P. chrysogenum und Trichoderma spp. wurden in vitro auf ihre nematizide Wirkung auf Jungtiere von M. javanica im zweiten Stadium getestet (Abb. 1). Die Ergebnisse zeigten, dass die Nematodenmortalität mit Pilzkulturfiltraten mit der Verlängerung der Expositionszeit von 24 auf 72 Stunden (FCF) von Trichoderma spp. zunahm. war wirksamer gegen M. javanica J2, gefolgt von P. chrysogenum mit Sterblichkeitsraten (97,67 bzw. 95 %) nach 72 Stunden Expositionszeit.

Einfluss von vier Pilzkulturfiltraten (FCFs) auf den Mortalitätsprozentsatz von M. javanica J2 unter Laborbedingungen.

In einem Labor wurde ein Experiment durchgeführt, um die Wirksamkeit von Pilzkulturfiltraten (FCFs) aus endophytischen Pilzen in einer Konzentration von 10 % (v/v) als Biokontrollmittel gegen F. solani zu untersuchen. Die Studie umfasste das Testen der FCFs von A. terreus (1) und A. terreus (2), P. chrysogenum und Trichoderma spp. gegen den verursachenden Erreger (wie in Abb. 2 und 3A–E dargestellt). Die Ergebnisse zeigten, dass die FCFs das Wachstum des Erregers mit unterschiedlicher Wirksamkeit hemmten. Die Behandlung mit FCFs dieser antagonistischen Pilze reduzierte das lineare Wachstum des getesteten Krankheitserregers im Vergleich zur Kontrolle (destilliertes Wasser) deutlich. Bemerkenswert ist, dass Trichoderma spp. (Abb. 3D) die höchste prozentuale Hemmung des radialen Wachstums des verursachenden Erregers zeigte (68 %), gefolgt von P. chrysogenum (53,88 %) (Abb. 3C). Im Gegensatz dazu hatte A. terreus (2) die geringste Hemmwirkung (24,11 %) (Abb. 3B).

Wirkung von vier Pilzkulturfiltraten (FCFs) auf das radiale Wachstum von F. solani unter Laborbedingungen nach vier Tagen.

Antimykotische Aktivität endophytischer Pilzkulturfiltrate gegen den Erreger F. solani. Wo: (A) A. terreus (1); (B) A. terreus (2); (C) P. chrysogenum; (D) Trichoderma spp.; und (E) Kontrolle.

Die Wirkungen von P. chrysogenum (FCFP) und Trichoderma spp. (FCFT) angewendet als Blattspray und Bodentränkung zur Bekämpfung des Wurzelfäulepilzes (F. solani) und des Wurzelknotennematoden-Krankheitskomplexes (M. javanica) zum Wachstum und zu den anatomischen Eigenschaften von Okra-Pflanzen cv. OH-102 wurden unter Gewächshausbedingungen untersucht. Die in Tabelle 1 und Abb. 4 dargestellten Daten zeigten, dass alle Anwendungen der getesteten (FCFs) die Werte der Wurzelgallen pro Wurzel und der Nematodenreproduktion an Okra-Wurzeln im Vergleich zu unbehandelten Pflanzen [Kontrolle (T14)] signifikant reduzierten. Daher verursachten (FCFP) als Bodentränkungen (T4) und Blattsprays (T8) jeweils die niedrigsten Gallenzahlen (40 und 49). Während (FCFP) als Bodentränkung (T4) und Blattspray (T8) die geringste Nematodenreproduktionsrate verursachte (2,32 bzw. 4,42). Andererseits verzeichneten mit T1 inokulierte Pflanzen die höchste Anzahl an Gallen und Nematodenreproduktionsraten (170 bzw. 21,20), gefolgt von T5 (143 bzw. 16,75). Die höchsten Werte der endgültigen Nematodenpopulation und der Anzahl der Gallen lagen unter T1, während die niedrigsten Werte der endgültigen Nematodenpopulation und der Anzahl der Gallen unter T4 lagen.

Eine Veranschaulichung der Wirkung von Spray oder Überlauf von P. chrysogenum (FCFP) und Trichoderma spp. (FCFT) infiziert mit Wurzelknotennematoden und/oder Wurzelfäulepilzen, die Okra unter Gewächshausbedingungen infizieren.

Die in Tabelle 1 dargestellten Daten zeigen, dass F. solani in der Lage war, Okra-Pflanzen zu infizieren, was in unterschiedlichem Ausmaß zu Wurzelfäule führte. Daher verursachte T5 den höchsten Schweregrad der Erkrankung (60 %), gefolgt von T1 und T11 (48 %). Während die Krankheitsschwere von T3 und T9 relativ gesehen die gleiche Krankheitsschwere (40 %) aufwies. Andererseits wurde bei T6 die niedrigste erreichte Krankheitsschwere verzeichnet (28 %), relativ gefolgt von T12 (8 %).

Die Pflanzenmetriken wurden unter den Umständen einer einzelnen Nematodeninfektion, einer einzelnen Pilzinfektion oder beider zusammen mit der niedrigsten Signifikanz angeboten (Tabelle 2). Im Allgemeinen führte die Anwendung der Pilzkulturfiltrate (FCFP, T) zu einer signifikanten Steigerung der meisten gemessenen Merkmale, unabhängig davon, ob es sich um ein Sprühsystem oder ein Überlaufsystem handelte. Die höchsten von T12 und T8 aufgezeichneten Triebe waren (42,71 und 42,64 cm). bzw. während die kürzeste Sprosslänge unter T5 mit (21,51 cm) beobachtet wurde. Die Eigenschaft der Wurzellänge war durch Besprühen (FCFT, P) bei der Behandlung von Nematoden- und Pilzinfektionen unter T8, T9 und T12 signifikant höher (34,81, 35,82 bzw. 35,94 cm), und der niedrigste signifikante Wert wurde bei Nematoden und festgestellt Pilzinfektion T5 (19,1 cm). Das größte unter T12 und T11 beobachtete Pflanzengewicht (49 und 48,33 g) sowie das kleinste genannte Gewicht betrugen 16,67 g. mit Nematoden- und Pilzinfektion (T5). Beim Stammdurchmesser wurden mehrere signifikante Werte festgestellt, und der höchste von (FCFP) aufgeführte Bereich, der als Spray zur Behandlung von Nematoden- und Pilzinfektionen (T8) angewendet wurde, betrug 1,43 mm, während der kleinere Bereich 0,76 mm für Nematodeninfektionen (T1) betrug. Das Merkmal Anzahl der Zweige zeigte unterschiedliche Bedeutung: T4, T8 und T9 führten zur höchsten Anzahl von Zweigen (5,00, 4,33 bzw. 4,33). Die niedrigste Anzahl von Zweigen, die bei der Behandlung von Nematoden- und Pilzinfektionen (T5) festgestellt wurde, war jedoch ( 2,00). Obwohl die Behandlung T12 (Fungizid) die höchste Behandlung war, die die größte Blattfläche (40,69 cm2) aufwies, gab es keinen signifikanten Unterschied zwischen ihr und der Anwendung von (FCFP), da sie für Nematoden- und Pilzinfektionen (T6) und (FCFT) überlaufen war ) als Blattspray (T9) betrugen 39,67 bzw. 37,90 cm2, und die minimale Blattfläche betrug 16,41 cm2 durch Pilzinfektion (T1). Obwohl die Behandlung T12 (Fungizid) die höchste Behandlung war, die die höchste Anzahl an Blättern aufwies (19,33), gab es keinen signifikanten Unterschied zwischen ihr und der Anwendung von (FCFP) als Überlauf zur Behandlung von Pilzen allein (T11) und Nematoden allein (T2). ) hatte eine höhere Blattzahl von 16,67 bzw. 15,67, während die niedrigste Blattzahl unter T1 3,67 betrug. Ansonsten gab es keine signifikanten Unterschiede zwischen T12 [(Pilzinfektion (F. solani) + (Dovex 50 % Fungizid mit Bewässerungswasser)] und T9 [Nematodeninfektion (M. javanica) + Pilzinfektion (F. solani) + Besprühen mit Pilzkulturfiltrat (Trichoderma spp.)] im Fruchtertrag, da der Fruchtertrag unter T12 34,77 g Pflanze−1 und unter T9 33,27 g Pflanze−1 betrug.

In dieser Studie wurde (FCFT) als Blattspray gegen Nematoden- und Pilzinfektionen kombiniert (T9) gleich in der Anzahl der Früchte mit Kontrollbehandlung (T14) behandelt. Der größte Anstieg der Fruchtlänge wurde unter T4 (9,93 cm) verzeichnet, gefolgt von (FCFP) als Überlauf mit behandelter Nematoden- und Pilzinfektion zusammen und Pilzinfektion T6 (9,77 cm). Der niedrigste Wert wurde auch bei behandelter Nematoden- und Pilzinfektion T5 gemeldet (7,93 cm). Die Anwendung von (FCFP) als Überlauf mit Nematoden- und Pilzinfektion in Kombination (T6) erreichte das Gewicht der Früchte (11,13 g), gefolgt von (FCFT) als Blattspray mit Nematoden- und Pilzinfektion in Kombination T9 (10,43 g). während die niedrigsten Werte bei der Nematoden- und Pilzinfektionsbehandlung T5 (7,17 g) festgestellt wurden.

Die anatomischen Studien zur Verfolgung der inneren Strukturveränderungen, die die auffälligste Reaktion gegen Wurzelknotennematoden, Wurzelfäulepilze und Pilzkulturfiltrat von P. chrysogenum zeigten, die als Überlauf- oder Blattspray angewendet wurden, und deren Auswirkung auf die mittleren Zählwerte und Messungen in Mikron (μ) bestimmter histologischer Merkmale von Wurzeln, Stängeln und Blättern von Okra, die in den Plastiktöpfen gewachsen sind, 60 Tage nach der Aussaat, basierend auf Querschnitten.

Daten in Tabelle 3 und Abb. 3, 4 und 5 zeigen offensichtlich die Wirkung verschiedener angewandter Behandlungen: T1 [Nematodeninfektion (M. javanica)], T5 [Nematodeninfektion (M. javanica) + Pilzinfektion (F. solani)], T6 [Nematodeninfektion (M. javanica)] . javanica) + Pilzinfektion (F. solani) + Überlauf mit Pilzkulturfiltrat (P. chrysogenum)], T7 [Nematodeninfektion (M. javanica) + Pilzinfektion (F. solani) + Überlauf mit Pilzkulturfiltrat (Trichoderma spp .)], T13 [Pilzinfektion (F. solani)] und auf unterschiedliche anatomische Merkmale von Okra-Wurzel, -Stamm und -Blättern im Vergleich zu unbehandelten Pflanzen (T14). In einer aktuellen Studie haben die meisten dieser angewandten Behandlungen einen positiven Einfluss auf die meisten untersuchten histologischen Eigenschaften verschiedener Okra-Organe, d. Kortexdicke, Ø von VC und VB-Dicke) sowie Blätter (Schwamm- und Palisadengewebedicke und VB-Dicke).

Querschnitte (×12,5) von Okra-Wurzeln 60 Tage nach der Aussaat, wie sie durch verschiedene angewandte Behandlungen beeinflusst wurden. Wobei: T1 = [Nematodeninfektion (M. javanica)]; T5 = [Nematodeninfektion (M. javanica) + Pilzinfektion (F. solani)]; T6 = [Nematodeninfektion (M. javanica) + Pilzinfektion (F. solani) + Überlauf mit Pilzkulturfiltrat (P. chrysogenum)]; T7 = [Nematodeninfektion (M. javanica) + Pilzinfektion (F. solani) + Überlauf mit Pilzkulturfiltrat (Trichoderma spp.)]; T13 = Pilzinfektion (F. solani); T14 = [Kontrolle (unbehandelt)]; Ep-Epidermis, Co-Cortex-Gewebe, Ph-Phloem-Gewebe, Xy-Xylem-Gewebe.

Die erhaltenen Ergebnisse zeigten deutlich, dass die Anwendung von T7 [Nematodeninfektion (M. javanica) + Pilzinfektion (F. solani) + Überlauf mit Pilzkulturfiltrat (Trichoderma spp.)] und T6 [Nematodeninfektion (M. javanica) + Pilz Infektion (F. solani) + Überlauf mit Pilzkulturfiltrat (P. chrysogenum)] Behandlungen verzeichneten die höchsten Werte der untersuchten anatomischen Merkmale nach unbehandelter Behandlung (T14) im Vergleich zu anderen angewandten Behandlungen.

In der vorliegenden Untersuchung verringerten die Behandlungen gegen Nematodeninfektion (T1), Pilzinfektion (T13) oder Nematodeninfektion + Pilzinfektion (T5) die morphologischen Eigenschaften der Okrawurzel im Vergleich zur Kontrolle (T14), T6 und am stärksten T7. Die gewonnenen Erkenntnisse sind in Tabelle 3 und Abb. 5 dargestellt. Zahlreiche anatomische Merkmale, insbesondere T5, zeigten eine deutliche Verringerung ihrer Dicke. Da es die größten negativen Auswirkungen auf die untersuchten anatomischen Merkmale hatte. Die wichtigsten anatomischen Merkmale waren der Durchmesser der Wurzel (µm), der Durchmesser des VC (µm) und die Länge des Xylem-Arms (µm), wobei diese alle bei T5 im Vergleich zur Kontrolle (T14) und T7 signifikant reduziert waren.

Es ist interessant festzustellen, dass die guten Auswirkungen der Behandlungen auf viele anatomische Merkmale vollständig zunichte gemacht wurden, wenn die vegetative und reproduktive Entwicklung der behandelten Pflanzen beschleunigt wurde, insbesondere bei den Kontrollbehandlungen (T14) und (T7) im Vergleich zu anderen Behandlungen. Die aktuelle Untersuchung zeigte eine Zunahme sowohl des Xylemgewebes, das für den Transport verschiedener Assimilate von Blättern zu Früchten und anderen Pflanzensenken verantwortlich ist, als auch des Phloemgewebes, das für den Transport von Wasser und Mineralnährstoffen von den Wurzeln zu den Blättern verantwortlich ist. Daher könnte der Anstieg des endgültigen Fruchtertrags direkt auf die Verbesserung der Translokationsereignisse zurückzuführen sein.

Die erhaltenen Ergebnisse in Tabelle 3 und Abb. 6 zeigen, dass die Behandlungen einer Nematodeninfektion (T1) oder einer Pilzinfektion (T13) oder einer Nematodeninfektion + Pilzinfektion (T5) in der vorliegenden Studie im Vergleich zu den meisten anatomischen Merkmalen des Okra-Stiels abnahmen die (T14), T6 und T7. Okra-Pflanzen mit Kontrolle (T14) und T7 schienen die wirksamste Behandlung zu sein. Diese Behandlung zeigte die besten Ergebnisse, da sie hinsichtlich der am häufigsten untersuchten anatomischen Merkmale die der Nematodeninfektion + Pilzinfektion (T5) übertraf. Bezüglich des Stammdurchmessers erreichte er im Vergleich zu anderen Behandlungen seinen Maximalwert (3807,31 eμ) bei Nematodeninfektion + Pilzinfektion (T5). Die Anwendungsbehandlungen der Kontrolle (T14) und T7 verzeichneten im Vergleich zu anderen angewandten Behandlungen hohe Werte der untersuchten anatomischen Eigenschaften des Stammes, insbesondere beim Ø der Wurzel (µm), Ø des VC (µm) und der Länge des Xylemarms (µm).

Querschnitte (×12,5) von Okra-Stängeln 60 Tage nach der Aussaat, wie sie durch verschiedene angewandte Behandlungen beeinflusst wurden. Wobei: T1 = [Nematodeninfektion (M. javanica)]; T5 = [Nematodeninfektion (M. javanica) + Pilzinfektion (F. solani)]; T6 = [Nematodeninfektion (M. javanica) + Pilzinfektion (F. solani) + Überlauf mit Pilzkulturfiltrat (P. chrysogenum)]; T7 = [Nematodeninfektion (M. javanica) + Pilzinfektion (F. solani) + Überlauf mit Pilzkulturfiltrat (Trichoderma spp.)]; T13 = Pilzinfektion (F. solani); T14 = [Kontrolle (unbehandelt)]; Ep-Epidermis, Co-Cortex-Gewebe, Ph-Phloem-Gewebe, Xy-Xylem-Gewebe, Pi-Markgewebe.

Es ist interessant festzustellen, dass die Verbesserung der vegetativen und reproduktiven Entwicklung der behandelten Pflanzen diese positiven Reaktionen verschiedener anatomischer Merkmale auf die Behandlungen vollständig umkehrte, insbesondere im Fall der Kontrolle (T14) und T7 im Vergleich zu anderen Behandlungen. Die aktuelle Untersuchung zeigte daher solche Ausdehnungen des Xylemgewebes bzw. der Weiterleitung verschiedener Assimilate von Blättern zu Früchten und anderen Pflanzensenken sowie von Phloemgewebe bzw. dem Weg der Wasser- und Mineralnährstofftranslokation von den Wurzeln zu den Blättern. Infolgedessen könnte ein Anstieg der letztendlichen Fruchtproduktion direkt auf bessere Translokationsereignisse zurückgeführt werden.

Die Informationen in Tabelle 3 und Abb. 7 zeigten, wie die untersuchten histologischen Merkmale des Blattes ähnlich auf die anatomischen Merkmale des Stiels reagierten. Bei Mesophyllgewebe hatte die Anwendung von M. javanica (T1), F. solani (T13) und M. javanica + F. solani einen signifikanten Einfluss auf die Dicke sowohl des Schwamm- als auch des Palisadengewebes (T5). Hier verringerte sich der Wert der Schwammgewebedicke (127,85 cμ) mit T5, stieg jedoch auf (133,29 cμ) bzw. (128,53 cμ) mit T1 bzw. T13, die in derselben Reihenfolge die wirksameren Behandlungen waren. Im Gegensatz dazu betrug die Dicke des Palisadengewebes (143,51 d bzw. 142,64 dμ) bei T1 bzw. T13, verringerte sich jedoch auf (141,79 dμ) bei T5. Bezüglich der VB-Dicke (µm) wurden ihre Maximalwerte bei der T5-Behandlung erreicht. Hier wurde die VB-Dicke (µm) mit T5 verringert (170,67 fμ), während sie mit T1 und T13 auf (193,14 d) bzw. (185,81 eμ) anstieg, wobei es sich in derselben Reihenfolge um die wirksameren Behandlungen handelte.

Querschnitte (×100) von Okra-Blättern 60 Tage nach der Aussaat, wie sie durch verschiedene angewandte Behandlungen beeinträchtigt wurden. Wobei: T1 = [Nematodeninfektion (M. javanica)]; T5 = [Nematodeninfektion (M. javanica) + Pilzinfektion (F. solani)]; T6 = [Nematodeninfektion (M. javanica) + Pilzinfektion (F. solani) + Überlauf mit Pilzkulturfiltrat (P. chrysogenum)]; T7 = [Nematodeninfektion (M. javanica) + Pilzinfektion (F. solani) + Überlauf mit Pilzkulturfiltrat (Trichoderma spp.)]; T13 = Pilzinfektion (F. solani); T14 = [Kontrolle (unbehandelt)]; Ue obere Epidermis, le untere Epidermis, pH-Phloemgewebe, xy-Xylemgewebe.

Die gewonnenen Ergebnisse zeigen im Allgemeinen, dass verabreichte Therapien, insbesondere T6 und T7, eine schützende Abwehrfunktion als Widerstandsinduktoren gegen schädliche Auswirkungen haben, indem sie die anatomische Leistungsfähigkeit und das metabolische Abwehrsystem verbessern. Die Daten zeigten deutlich, dass die angewandten Behandlungen, insbesondere die Kontrollmedikamente (T14), T6 und T7, eine defensive und schützende Rolle als Resistenzinduktoren gegen nachteilige Auswirkungen spielen, indem sie die anatomische Leistungsfähigkeit und das metabolische Abwehrsystem verbessern und sich positiv auf alle untersuchten anatomischen Merkmale auswirken der Wurzel (Ø der Wurzel, Dicke der Rinde, Ø der VC und Länge des Xylembogens), für den Stamm (Ø des Stammes, Dicke der Rinde, Ø der VC und VB-Dicke) sowie der Blätter (Dicke des Schwamm- und Palisadengewebes und der VB-Dicke). ). Während die verwendeten Behandlungen von T1 und T13 im Vergleich zu nicht gestressten Pflanzenbehandlungen einen negativen Einfluss auf die meisten der untersuchten anatomischen Eigenschaften von Wurzeln, Stängeln und Blättern von Okra-Pflanzen hatten. Diese Rückgänge waren bei M. javanica (T1), F. solani (T13) und M. javanica + F. solani (T5) stärker ausgeprägt.

Das Biokontrollpotenzial von P. chrysogenum und Trichoderma spp. gegen Wurzelknotennematoden und Fusarium spp. wurde sowohl durch Labor- als auch durch Topfversuchsergebnisse weiter bestätigt. Trichoderma spp. Es wurde berichtet, dass Arten Fusarium spp. unterdrücken. und pflanzenparasitäre Nematoden25,26,27 aufgrund ihrer Fähigkeit, hydrolytische Enzyme zu produzieren, die Chitin in Pilzzellwänden abbauen28 sowie Antibiotika29. Trichoderma spp. können Wurzelnematoden direkt bekämpfen, indem sie giftige Verbindungen produzieren, die ihr Eindringen und Wachstum verhindern30,31,32. Beispielsweise reduzierten T. viride und T. harzianum die Population von M. javanica in Okra-33,34 und Tomatenpflanzen35,36,37. Zu ihren zerstörerischen Aktivitäten gehören die enzymatische Zerstörung von Eierschalen und Larvenkutikeln sowie physiologische Anomalien, die aus der Produktion diffundierbarer toxischer Metaboliten resultieren38,39. Studien von Sankari Meena et al.40 und Poveda et al.41 berichteten, dass die Verwendung von T. harzianum zu verbesserten Pflanzenentwicklungsdaten und einer Verringerung des Pilz-Nematoden-Krankheitskomplexes führte. Darüber hinaus wurde festgestellt, dass T. harzianum Pflanzenresistenz induziert und das Pflanzenwachstum fördert42.

Die nematotoxischen Eigenschaften der Pilzkulturfiltrate verschiedener Pilze verleihen der Biokontrolle von Phytonematoden ein neues Niveau. Pilzkulturfiltrat von T. harzianum hat nachweislich nematotoxische Wirkung43, Alternaria alternata, A. flavus, P. chrysogenum, Rhizoctonia bataticola, T. viride wurden von Kumar et al.44 dokumentiert.

Durch die Verringerung der Entwicklung des Krankheitserregers um bis zu 60,4 % zeigt das Kulturfiltrat von T. harzianum eine antimykotische Wirkung gegen F. oxysporum und verleiht Sojabohnen Resistenz gegen F. oxysporum45. Das Wachstum von Bohnenpathogenen kann durch T. harzianum-Kulturfiltrat gehemmt werden. In Samen von Phaseolus vulgaris lindert Pythium ultimum die durch diesen Krankheitserreger verursachten Krankheitssymptome46. Die Chitinaseaktivität zellfreier Kulturfiltrate verbesserte sich und sie zeigten eine Hemmung des Pilzwachstums gegen die Krankheitserreger Dematophora necatrix, F. solani, F. oxysporum und Pythium aphanidermatum. Der Effekt war konzentrationsabhängig, wobei die maximale Wachstumshemmungsrate für alle getesteten Krankheitserreger bei einer Konzentration von 25 % des Filtrats auftrat28.

Der Schweregrad der Erkrankung (%) nahm nach der Anwendung von Pilzkulturfiltraten dramatisch ab und die Pflanzenwachstumswerte verbesserten sich. Diese Ergebnisse stimmen mit denen von Hegazy et al.47 bei Sesampflanzen und Herrera-Téllez et al.48 bei Tomatenpflanzen überein. Außerdem Hemmung des Myzelwachstums durch Kulturfiltrate verschiedener Biowirkstoffe49.

Mikroorganismen können bestimmte antimikrobielle Verbindungen produzieren50. Für Pilze, insbesondere endophytische Pilze, gibt es mehrere Möglichkeiten, sekundäre Metaboliten zu erzeugen, die wichtige Quellen für antimikrobielle Substanzen mit wachstumshemmender Wirkung auf Phytopathogene sind und als biologische Bekämpfungsmittel eingesetzt werden können51,52.

Offensichtlich zeigen die Ergebnisse die Wirkung verschiedener angewandter Behandlungen: T1 [Nematodeninfektion (M. javanica)], T5 [Nematodeninfektion (M. javanica) + Pilzinfektion (F. solani)], T6 [Nematodeninfektion (M. javanica)] + Pilzinfektion (F. solani) + Überlauf mit Pilzkulturfiltrat (P. chrysogenum)], T7 [Nematodeninfektion (M. javanica) + Pilzinfektion (F. solani) + Überlauf mit Pilzkulturfiltrat (Trichoderma spp.)] , T13 [Pilzinfektion (F. solani)] auf unterschiedliche anatomische Merkmale von Okra-Wurzel, -Stamm und -Blättern im Vergleich zu unbehandelten Pflanzen (T14), die auf bestimmte histologische Merkmale von Haupt-Okra-Wurzel, -Stamm und -Blatt 60 Tage nach dem Pflanzen untersucht wurden. Die Behandlungen mit Pilzkulturfiltraten führten zu einem Anstieg der Anzahl der Xylemgefäße (NXV) im Gefäßbündel. Dieser Anstieg des NXV schien mit der Fähigkeit der Pflanze zusammenzuhängen, der Fusarium-Welke-Krankheit zu widerstehen. Darüber hinaus führte die Anwendung von Pilzkulturfiltrat zu einer Zunahme der Menge und Breite der Faserschichten sowie der Dicke der Kambiumregion (Ø) im Wurzel- und Gefäßzylinder. Dieser Anstieg wurde in allen analysierten Geweben beobachtet, mit Ausnahme der Dicke der Kortexschichten. Darüber hinaus wurde festgestellt, dass der Durchmesser des Stängels und der Epidermis, des Mesophyllgewebes und die Dicke der Leitbündel (VB) in den Blättern wichtige Abwehrkräfte gegen FOC-Infektionen sind und bei Pflanzen, die mit Pilzkulturfiltrat behandelt wurden, positiv beeinflusst wurden. Beobachtungen an mit Pilzkulturfiltrat behandelten Pflanzen zeigten das Vorhandensein eines frischen und regenerierten Leitbündels. Die Vorbehandlung von Okra-Samen mit diesem Filtrat führte zu positiven Veränderungen ihrer wasserleitenden Elemente, was eine bessere Wasseraufnahme durch die Pflanzen ermöglichte und die Ausbreitung von Welkekrankheiten verringerte. Tatsächlich spielen die tracheären Bestandteile des Xylems, die als wasserleitendes System der Pflanze fungieren, eine entscheidende Rolle bei der Unterstützung des Pflanzenwachstums und der Pflanzenentwicklung53. Diese Ergebnisse stehen im Einklang mit der Studie von Ahmed und seinen Kollegen an Gurkenpflanzen54. Die Gestaltung des internen Wurzelsystems kann durch eine Vielzahl biotischer und abiotischer Reize beeinflusst werden, darunter Bakterien, die die Pflanzenentwicklung fördern (PGPM)55; Die vorherrschenden Gattungen von PGPM sind Rhizobia, Acetobacter, Bradyrhizobium, Bacillus, Pseudomonas, Trichoderma56 und Penicillium57. Pflanzenwachstumsfördernde Mikroorganismen (PGPM) induzieren hauptsächlich Veränderungen in der Architektur des inneren Wurzelsystems und der Struktur des Wurzelgewebes, indem sie in die phytohormonellen Gleichgewichtswege der Pflanze eingreifen, die die Zellentstehung und -differenzierung regulieren58. Mehrere Studien haben berichtet, dass PGPM Pflanzen vor Phytopathogenen schützen kann, indem es die Abwehrmechanismen der Pflanze induziert, die als induzierte systemische Resistenz (ISR) bekannt sind. Dieses Phänomen wurde ausführlich im Übersichtsartikel59 diskutiert. Durch ISR wird die Zellwand durch eine erhöhte Ligninproduktion und Kalloseapposition gestärkt, was die Ausbreitung von Phytopathogenen im Pflanzengewebe verlangsamt60. Durch PGPM-induzierte Veränderungen in der Wurzelarchitektur und Gewebestruktur sind Pflanzen in der Lage, Wasser und Nährstoffe effizienter aufzunehmen, was zu einer insgesamt schnelleren Pflanzenentwicklung führt. Darüber hinaus ist die Inokulation mit P. chrysogenum und Trichoderma spp. kann das Pflanzenwachstum fördern, die Ansammlung von Biomasse verbessern und die Nährstoffaufnahme im Boden durch Pflanzen verbessern59. Ein möglicher Abwehrmechanismus gegen die Okra-Fusarium-Welke wurde durch die erhöhte Anzahl der Xylemgefäße und die Breite der Gefäßbündel durch die Behandlungen nahegelegt.

Unsere Forschungsergebnisse stimmen mit denen von El-Sayed61 überein, der gezeigt hat, dass die Verwendung von Trichoderma spp. Kulturfiltrate zur Behandlung von Ackerbohnenpflanzen gegen Welkeerreger ergaben in anatomischen Untersuchungen starke Hinweise auf Resistenzen. Wenn Bioinduktoren durch Sprühen auf Pflanzen aufgebracht werden, kommt es gleichzeitig zu histopathologischen Veränderungen und der Auslösung einer systemisch erworbenen Resistenz, die das Pflanzenwachstum im Vergleich zu ungesprühten Pflanzen wahrscheinlich steigert.

Insgesamt zeigen die erhaltenen Daten deutlich, dass die Verwendung von Pilzfiltraten, insbesondere die Verwendung von Penicillium-Pilzfiltrat als Spray auf Pflanzen (T6) oder als Überlauf (T8), eine schützende Abwehrfunktion als Widerstandsinduktoren gegen schädliche Auswirkungen durch die Verbesserung der anatomischen Leistungsfähigkeit und des Stoffwechsels spielt Verteidigungssystem. Es war offensichtlich, dass Kontrollpflanzen (Nematodeninfektion oder Pilzinfektion oder beides zusammen) von innen negativ beeinflusst wurden, was möglicherweise darauf zurückzuführen ist, dass sie keine Mechanismen entwickelt hatten, mit denen sie sich vor biotischen Belastungen schützen konnten.

Die vorliegende Studie hat gezeigt, dass die Biokontrollmittel den Krankheitskomplex bei Okra gut unter Kontrolle brachten. Die Anwendung von [Nematodeninfektion (M. javanica) + Pilzinfektion (F. solani) + Überlauf mit Pilzkulturfiltrat (P. chrysogenum)] und [Nematodeninfektion (M. javanica) + Pilzinfektion (F. solani) + Spray mit Pilzkulturfiltrat (P. chrysogenum)] wurden die Reproduktionsfaktoren im Gewächshaus deutlich verringert und hatten den größten Einfluss auf die Fressindizes von Nematoden an Okra-Wurzeln. [Nematodeninfektion (M. javanica) + Pilzinfektion (F. solani) + Überlauf mit Pilzkulturfiltrat (P. chrysogenum)] war in dieser Hinsicht das wirksamste Medikament und reduzierte die Schwere der Erkrankung vergleichsweise um (28 %). Andererseits hatte die Behandlung [(Pilzinfektion (F. solani) + (Dovex 50 % Fungizid mit Bewässerungswasser)] zu diesem Zeitpunkt den niedrigsten dokumentierten relativen Schweregrad der Erkrankung (8 %). Die Ergebnisse zeigten, dass alle anatomischen Eigenschaften untersucht wurden Die Anzahl der Okra-Wurzeln, -Stängel und -Blätter wurde durch eine Nematodeninfektion, eine Pilzinfektion oder eine Nematodeninfektion + Pilzinfektion verringert. Daher sollten sich zukünftige Studien auf die Entwicklung einer wirtschaftlichen und effizienten Massenproduktion dieser Biowirkstoffe konzentrieren, die für die Verwendung verwendet werden sollen Management dieses Krankheitskomplexes unter ägyptischen Bedingungen.

Alle Daten im Artikel verfügbar.

Habtemariam, S. & Habtemariam, S. Medizinische Lebensmittel als potenzielle Therapien für Typ-2-Diabetes und damit verbundene Krankheiten (Elsevier, 2019).

Google Scholar

Patil, JA, Kumar, A., Yadav, S. & Verma, KK Nematizide Wirkung von Kreuzblütler-Biobegasungsmitteln gegen den Wurzelknotennematoden, der Okra befällt. J. Nematol. https://doi.org/10.21307/jofnem-2020-080 (2020).

Artikel PubMed PubMed Central Google Scholar

Koenning, SR et al. Übersicht über Ernteverluste als Reaktion auf phytoparasitäre Nematoden in den Vereinigten Staaten im Jahr 1994. J. Nematol. 31, 587 (1999).

CAS PubMed PubMed Central Google Scholar

Mugniéry, D. & Phillips, MS Potato Biology and Biotechnology 569–594 (Elsevier, 2007).

Google Scholar

Meena, KS, Ramyabharathi, SA, Raguchander, T. & Jonathan, EI Interaktion von Meloidogyne incognita und Fusarium oxysporum in Nelken und physiologische Veränderungen, die in Pflanzen aufgrund der Interaktion hervorgerufen werden. SAARC J. Landwirtschaft. 14, 59–69. https://doi.org/10.3329/sja.v14i1.29576 (2016).

Artikel Google Scholar

Thomason, IJ Herausforderungen für die Nematologie: Umweltrisiken durch Nematizide und die Notwendigkeit neuer Ansätze. (1987).

Tudi, M. et al. Entwicklung der Landwirtschaft, Pestizidanwendung und ihre Auswirkungen auf die Umwelt. Int. J. Umgebung. Res. Public Health 18, 1112. https://doi.org/10.3390/ijerph18031112 (2021).

Artikel CAS PubMed PubMed Central Google Scholar

Sharon, E., Chet, I. & Spiegel, Y. Verbesserte Anhaftung und Parasitismus von Trichoderma an Meloidogyne javanica in vitro. EUR. J. Plant Pathol. 123, 291–299. https://doi.org/10.1007/s10658-008-9366-2 (2009).

Artikel CAS Google Scholar

Tian, X. et al. Unterdrückung von Meloidogyne incognita durch den endophytischen Pilz Acremonium implicatum aus Tomatenwurzelgallen. Int. J. Pest Manag. 60, 239–245. https://doi.org/10.1080/09670874.2014.958604 (2014).

Artikel Google Scholar

Ohwada, K. Agarplattenmethode zum Nachweis und zur Zählung von Alkylbenzolsulfonat abbauenden Mikroorganismen. Appl. Mikrobiol. 29, 40–43. https://doi.org/10.1128/am.29.1.40-43.1975 (1975).

Artikel CAS PubMed Central Google Scholar

Booth, C. Die Gattung Fusarium (Scientific Research Publishing, 1971).

Google Scholar

Davet, P. & Rouxel, F. Erkennung und Isolierung von Bodenpilzen (Science Publishers Inc, 2000).

Google Scholar

Nelson, PE, Dignani, MC & Anaissie, EJ Taxonomie, Biologie und klinische Aspekte von Fusarium-Arten. Klin. Mikrobiol. Rev. 7, 479–504. https://doi.org/10.1128/CMR.7.4.479 (1994).

Artikel CAS PubMed PubMed Central Google Scholar

Leslie, JF & Summerell, BA The Fusarium Laboratory Manual (Wiley, 2008).

Google Scholar

Ismail, MA, Abdel-Hafez, SII, Hussein, NA & Abdel-Hameed, NA Beiträge zur Gattung Fusarium in Ägypten mit dichotomen Schlüsseln zur Identifizierung von Arten (Tomasz M. Karpiński, 2015).

Google Scholar

Hallmann, J., Berg, G. & Schulz, B. Microbial Root Endophytes 299–319 (Springer, 2006).

Google Scholar

Domsch, KH, Gams, W. & Anderson, T.-H. Kompendium der Bodenpilze. Bd. 1. (Academic Press Ltd., 1980).

Domsch, KH, Gams, W. & Anderson, T.-H. Kompendium der Bodenpilze, 2. taxonomisch überarbeitete Auflage von W. Gams. (IHW, 2007).

Hussey, RS Ein Vergleich der Methoden zum Sammeln von Inokula von Meloidogyne spp., einschließlich einer neuen Technik. Pflanzendis. Rep. 57, 1025–1028 (1973).

Google Scholar

Southey, JF Labormethoden für die Arbeit mit Pflanzen- und Bodennematoden (1986).

Hassan, MHA Biologische Kontrolle bestimmter Pflanzenkrankheiten, die durch Sklerotien produzierende Pilze verursacht werden (1992).

Abdel-Razik, SA, Sallam, NMA, Eraky, AMI & Hassan, MHA Integrierte Bekämpfung von Wurzelfäule und Welkekrankheit bei Ackerbohnen durch Bodenverbesserung mit unterdrückendem Kompost in Kombination mit Samenbeschichtung mit einer antagonistischen Hefe. Bogen. Phytopathol. Pflanzenschutz. 45, 1692–1704 (2012).

Artikel Google Scholar

Johanson, DV Plant Microtechnique 27–154 (McGrow-hill Book Co., 1940).

Google Scholar

Gomez, KA & Gomez, AA Statistische Verfahren für die Agrarforschung (Wiley, 1984).

Google Scholar

Hossain, MM, Sultana, F., Kubota, M., Koyama, H. & Hyakumachi, M. Der pflanzenwachstumsfördernde Pilz Penicillium simplicissimum GP17-2 induziert Resistenz bei Arabidopsis thaliana durch Aktivierung mehrerer Abwehrsignale. Pflanzenzellphysiologie. 48, 1724–1736. https://doi.org/10.1093/pcp/pcm144 (2007).

Artikel CAS PubMed Google Scholar

Sood, M. et al. Trichoderma: Die „Geheimnisse“ eines vielseitigen Biokontrollmittels. Pflanzen (Basel, Schweiz) https://doi.org/10.3390/plants9060762 (2020).

Artikel PubMed Google Scholar

Tyśkiewicz, R., Nowak, A., Ozimek, E. & Jaroszuk-Ściseł, J. Trichoderma: Der aktuelle Stand seiner Anwendung in der Landwirtschaft zur Biokontrolle von Pilz-Phytopathogenen und zur Stimulierung des Pflanzenwachstums. Int. J. Mol. Wissenschaft. 23, 2329. https://doi.org/10.3390/ijms23042329 (2022).

Artikel CAS PubMed PubMed Central Google Scholar

Mohiddin, FA et al. Phylogenie und Optimierung von Trichoderma harzianum für die Chitinaseproduktion: Bewertung ihres antimykotischen Verhaltens gegenüber den prominenten bodenbürtigen Phytopathogenen des gemäßigten Indiens. Microorganisms 9, 1962. https://doi.org/10.3390/microorganisms9091962 (2021).

Artikel CAS PubMed PubMed Central Google Scholar

Asad, SA Wirkmechanismen und Biokontrollpotenzial von Trichoderma gegen Pilzkrankheiten bei Pflanzen – Eine Übersicht. Ökologisch. Komplex. 49, 100978. https://doi.org/10.1016/j.ecocom.2021.100978 (2022).

Artikel Google Scholar

Bokhari, FM Wirksamkeit einiger Trichoderma-Arten bei der Bekämpfung von Rotylenchulus reniformis und Meloidogyne javanica. Bogen. Phytopathol. Pflanzenschutz. 42, 361–369 (2009).

Artikel CAS Google Scholar

Mulusa, L. Nematoden – Aktuelle Fortschritte, Management und neue Perspektiven (IntechOpen, 2021).

Google Scholar

Yan, Y. et al. Trichoderma harzianum induziert Resistenz gegen Wurzelknotennematoden, indem es die Sekundärmetabolitensynthese und die abwehrbezogene Enzymaktivität in Solanum lycopersicum L. erhöht. Biol. Control 158, 104609. https://doi.org/10.1016/j.biocontrol.2021.104609 (2021).

Artikel CAS Google Scholar

Kumar, V. & Jain, RK Management von Wurzelknotennematoden, Meloidogyne incognita durch Trichoderma viride, T. harzianum und dem bakteriellen Antagonisten Pseudomonas fluorescens als Saatgutbehandlung bei Okra. Indischer J. Nematol. 40, 226–228 (2010).

Google Scholar

Arya, R. Einfluss von Kulturfiltraten von Trichoderma viridae und Trichothecium roseum, die auf verschiedenen Kohlenstoff- und Stickstoffquellen gezüchtet wurden, auf das Schlüpfen und die Mortalität von Wurzelknotennematoden (Meloidogyne incognita). Indischer J. Nematol. 41, 62–70 (2011).

CAS Google Scholar

Javeed, MT & Al-Hazmi, A. Wirkung von Trichoderma harzianum auf Meloidogyne javanica in Tomaten, beeinflusst durch den Zeitpunkt der Pilzeinführung in den Boden. J. Pure Appl. Mikrobiol. 9, 535–539 (2015).

Google Scholar

Dababat, AA, Sikora, RA & Hauschild, R. Verwendung von Trichoderma harzianum und Trichoderma viride zur biologischen Bekämpfung von Meloidogyne incognita auf Tomaten. Komm. Landwirtschaft. Appl. Biol. Wissenschaft. 71, 953–961 (2006).

CAS PubMed Google Scholar

d'Errico, G. et al. Synergistische Wirkungen von Trichoderma harzianum, 1,3-Dichlorpropen und organischem Material bei der Bekämpfung des Wurzelknotennematoden Meloidogyne incognita auf Tomaten. Pflanzen 11, 2890. https://doi.org/10.3390/plants11212890 (2022).

Artikel CAS PubMed PubMed Central Google Scholar

Morgan-Jones, G., White, JF & Rodriguez-Kabana, R. Phytonematode-Pathologie: Ultrastrukturelle Studien. I. Parasitismus von Meloidogyne arenaria-Eiern durch Verticillium chlamydosporium. Nematropica 3, 245–260 (1983).

Google Scholar

Morgan-Jones, G. & Rodriguez-Kabana, R. Arten von Verticillium und Paecilomyces als Parasiten von Zysten- und Wurzelknotennematoden. Phytopathology 74, 1–28 (1984).

Sankari Meena, K., Ramyabharathi, SA & Raguchander, T. Biomanagement des Nematoden-Pilz-Krankheitskomplexes bei Tuberose unter Verwendung von pflanzenwachstumsfördernden Rhizobakterien. Int. J. Sci. Nat. 7, 1–9 (2016).

Google Scholar

Poveda, J., Abril-Urias, P. & Escobar, C. Biologische Bekämpfung pflanzenparasitärer Nematoden durch filamentöse Pilze, die Resistenzen auslösen: Trichoderma, Mykorrhiza und endophytische Pilze. Vorderseite. Mikrobiol. 11, 992. https://doi.org/10.3389/fmicb.2020.00992 (2020).

Artikel PubMed PubMed Central Google Scholar

Kipngeno, P., Losenge, T., Maina, N., Kahangi, E. & Juma, P. Wirksamkeit von Bacillus subtilis und Trichoderma asperellum gegen Pythium aphanidermatum in Tomaten. Biol. Kontrolle 90, 92–95. https://doi.org/10.1016/j.biocontrol.2015.05.017 (2015).

Artikel Google Scholar

Benttoumi, N. et al. Die Vielfalt der mikrobiellen Nematodenantagonisten aus Algerien zeigt das Vorkommen nematotoxischer Trichoderma spp. Pflanzen 9, 941. https://doi.org/10.3390/plants9080941 (2020).

Artikel CAS PubMed PubMed Central Google Scholar

Kumar, S., Nath, R. & Kamalwanshi, RS Wirkung von Kulturfiltraten verschiedener Pilze auf die Mobilität von Jungtieren der zweiten Stufe von Meloidogyne incognita. Fortschritt. Hortisch. 42, 193–197 (2010).

Google Scholar

Zhang, F. et al. Trichoderma harzianum, das 1-Aminocyclopropan-1-carboxylat-Desaminase und Chitinase enthielt, verbesserte das Wachstum und verringerte die durch Fusarium oxysporum verursachten Nebenwirkungen bei Sojabohnen. J. Pflanzenphysiologie. 210, 84–94. https://doi.org/10.1016/j.jplph.2016.10.012 (2017).

Artikel CAS PubMed Google Scholar

Ghoniem, AA et al. Verbesserung des Potenzials von Trichoderma harzianum gegen den Pythium-Erreger von Bohnen unter Verwendung von Kamillenblütenextrakt (Matricaria chamomilla, L.). Molecules 26, 1178. https://doi.org/10.3390/molecules26041178 (2021).

Artikel CAS PubMed PubMed Central Google Scholar

Hegazy, MGA, El Shazly, AM, Mohamed, AA & Hassan, M. Einfluss bestimmter endophytischer Pilze als Biokontrollmittel gegen die Sesamwelke. Bogen. Landwirtschaft. Wissenschaft. J. 2, 55–68. https://doi.org/10.21608/aasj.2019.25059.1021 (2019).

Artikel Google Scholar

Herrera-Téllez, VI et al. Die schützende Wirkung von Trichoderma asperellum auf Tomatenpflanzen gegen Fusarium oxysporum- und Botrytis cinerea-Erkrankungen beruht auf der Hemmung der Produktion reaktiver Sauerstoffspezies. Int. J. Mol. Wissenschaft. 20, 2007. https://doi.org/10.3390/ijms20082007 (2019).

Artikel CAS PubMed PubMed Central Google Scholar

Bastakoti, S., Belbase, S., Manandhar, S. & Arjyal, C. Trichoderma-Arten als Biokontrollmittel gegen bodenbürtige Pilzpathogene. Nepal J. Biotechnologie. 5, 39–45. https://doi.org/10.3126/njb.v5i1.18492 (2017).

Artikel Google Scholar

Amaning Danquah, C., Minkah, PAB, Osei Duah Junior, I., Amankwah, KB & Somuah, SO Antimikrobielle Verbindungen aus Mikroorganismen. Antibiotika 11, 285. https://doi.org/10.3390/antibiotics11030285 (2022).

Artikel CAS PubMed PubMed Central Google Scholar

Xu, K., Li, X.-Q., Zhao, D.-L. & Zhang, P. Antimykotische Sekundärmetaboliten, die von Pilzendophyten produziert werden: Chemische Vielfalt und mögliche Verwendung bei der Entwicklung von Biopestiziden. Vorderseite. Mikrobiol. https://doi.org/10.3389/fmicb.2021.689527 (2021).

Artikel PubMed PubMed Central Google Scholar

Silva, DPD, Cardoso, MS & Macedo, AJ Endophytische Pilze als Quelle antibakterieller Verbindungen – Ein Schwerpunkt auf gramnegativen Bakterien. Antibiotika 11, 1509. https://doi.org/10.3390/antibiotics11111509 (2022).

Artikel CAS PubMed PubMed Central Google Scholar

Karam, GN Biomechanisches Modell der Xylemgefäße in Gefäßpflanzen. Bd. 95 (Oxford University Press, 2005).

Ahmed, GA Induktionsresistenz von Gurkenpflanzen (Cucumis sativus L.) gegen die Fusarium-Welkekrankheit unter geschützten Hausbedingungen. (Institut für Pflanzenschutz und Quarantäne, Kasachische Nationale Agraruniversität, 2011).

Mohamed, HI, El-Beltagi, HE-DS & Abd-Elsalam, KA Pflanzenwachstumsfördernde Mikroben für nachhaltiges biotisches und abiotisches Stressmanagement (Springer, 2021).

Buchen Sie Google Scholar

Saini, I. et al. Bedeutung arbuskulärer Mykorrhizapilze für Akazien: Eine Übersicht. Pak. J. Biol. Wissenschaft. PJBS 23, 1231–1236. https://doi.org/10.3923/pjbs.2020.1231.1236 (2020).

Artikel CAS PubMed Google Scholar

Hossain, MM, Sultana, F., Miyazawa, M. & Hyakumachi, M. Der pflanzenwachstumsfördernde Pilz Penicillium spp. GP15-1 fördert das Wachstum und verleiht der Gurke Schutz vor Verfall und Anthracnose. J. Oleo Sci. 63, 391–400 (2014).

Artikel CAS PubMed Google Scholar

Turan, M. et al. Verbesserung der Pflanzenwurzeln durch pflanzenwachstumsfördernde Rhizobakterien. Pflanzenwurzeln https://doi.org/10.5772/intechopen.99890 (2021).

Artikel Google Scholar

De Palma, M., Scotti, R., D'Agostino, N., Zaccardelli, M. & Tucci, M. Phytofreundliche Bodenbakterien und Pilze sorgen für positive Ergebnisse in der Wirtspflanze, indem sie deren Reaktionen durch (in) unterschiedlich modulieren. direkte Mechanismen. Pflanzen 11, 2672. https://doi.org/10.3390/plants11202672 (2022).

Artikel CAS PubMed PubMed Central Google Scholar

Yu, Y. et al. Induzierte systemische Resistenz zur Verbesserung der Pflanzenimmunität durch nützliche Mikroben. Pflanzen 11, 386. https://doi.org/10.3390/plants11030386 (2022).

Artikel CAS PubMed PubMed Central Google Scholar

El-Sayed, SA Kooperationsmöglichkeiten von Trichoderma spp. und Saccharomyces cerevisiae gegen Stauden- und Wurzelfäulekrankheiten der Ackerbohne. Ägypten. J. Phytopathol. 50, 65–78. https://doi.org/10.21608/EJP.2022.134177.1060 (2022).

Artikel Google Scholar

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Die Autoren danken allen Mitgliedern des College of Agriculture der Al-Azhar-Universität (Zweigstelle Assiut).

Open-Access-Finanzierung durch die Science, Technology & Innovation Funding Authority (STDF) in Zusammenarbeit mit der Egyptian Knowledge Bank (EKB).

Abteilung für Gartenbau, Hochschule für Landwirtschaft, Universität Al-Azhar (Zweigstelle Assiut), Assiut, 71524, Ägypten

Waleed M. Ali, Sadoun ME Sultan und Ahmed Fathy Yousef

Abteilung für Agrarzoologie und Nematologie, Fakultät für Landwirtschaft, Al-Azhar-Universität (Zweigstelle Assiut), Assiut, 71524, Ägypten

MA Abdel-Mageed

Abteilung für Agrarbotanik (Pflanzenpathologie), Fakultät für Landwirtschaft, Al-Azhar-Universität (Zweigstelle Assiut), Assiut, 71524, Ägypten

MGA Hegazy

Abteilung für Agrarbotanik (Allgemeine Botanik), Fakultät für Landwirtschaft, Al-Azhar-Universität (Zweigstelle Assiut), Assiut, 71524, Ägypten

MK Abou-Shellel

Abteilung für Agrarbotanik, Fakultät für Landwirtschaft Saba Basha, Universität Alexandria, Alexandria, 21531, Ägypten

Ehab AA Salama

Abteilung für Pflanzenbiotechnologie, Zentrum für pflanzliche Molekularbiologie und Biotechnologie, TNAU, Coimbatore, 641003, Indien

Ehab AA Salama

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Alle Autoren haben maßgeblich und gleichermaßen zur Konzeptualisierung, zum Schreiben, zur Bearbeitung und zur Überprüfung des aktuellen Manuskripts beigetragen. Alle Autoren stimmten der Einreichung des aktuellen Manuskripts zu.

Korrespondenz mit Waleed M. Ali oder Ahmed Fathy Yousef.

Die Autoren geben an, dass keine Interessenkonflikte bestehen.

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Open Access Dieser Artikel ist unter einer Creative Commons Attribution 4.0 International License lizenziert, die die Nutzung, Weitergabe, Anpassung, Verbreitung und Reproduktion in jedem Medium oder Format erlaubt, sofern Sie den/die ursprünglichen Autor(en) und die Quelle angemessen angeben. Geben Sie einen Link zur Creative Commons-Lizenz an und geben Sie an, ob Änderungen vorgenommen wurden. Die Bilder oder anderes Material Dritter in diesem Artikel sind in der Creative Commons-Lizenz des Artikels enthalten, sofern in der Quellenangabe für das Material nichts anderes angegeben ist. Wenn Material nicht in der Creative-Commons-Lizenz des Artikels enthalten ist und Ihre beabsichtigte Nutzung nicht gesetzlich zulässig ist oder über die zulässige Nutzung hinausgeht, müssen Sie die Genehmigung direkt vom Urheberrechtsinhaber einholen. Um eine Kopie dieser Lizenz anzuzeigen, besuchen Sie http://creativecommons.org/licenses/by/4.0/.

Nachdrucke und Genehmigungen

Ali, WM, Abdel-Mageed, MA, Hegazy, MGA et al. Biokontrollmittel des Wurzelknotennematoden Meloidogyne javanica und des Wurzelfäulepilzes Fusarium solani in Okra, morphologische, anatomische Eigenschaften und Produktivität unter Gewächshausbedingungen. Sci Rep 13, 11103 (2023). https://doi.org/10.1038/s41598-023-37837-z

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Eingegangen: 17. Februar 2023

Angenommen: 28. Juni 2023

Veröffentlicht: 09. Juli 2023

DOI: https://doi.org/10.1038/s41598-023-37837-z

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